凡是需要做分子生物學實驗的lab,肯定逃不了要買一台核酸定量的機器。目前最為流行的儀器是Nanodrop,隻需滴加一兩微升的樣品,按一下按鈕,利用核酸的紫外吸收特性,即可得到濃度數據。近幾年,以Qubitweidaibiaodejiyuteyiyingguangranliaofadeyiqiyezhujianjinrukeyanrenyuandeshiye。name,zheliangleiyiqiyoushenmequbie,zaishiyongshixuyaozhuyishenme,ruhegenjushiyanshixuqiulaixuangou?如下文所示。
首先我們需要來理解兩台儀器在核酸定量原理上的區別。正如方才所言,Nanodrop利用了核酸的紫外吸收特性。
Nanodrop
檢測方法原理為核酸、核苷酸及其衍生物都具有共軛雙鍵係統,能吸收紫外光,RNA和DNA的紫外吸收峰在260nm波長處。一般在260nm波長下,每1ml含1μg RNA溶液的光吸收值為0.022~0.024,每1ml含1μg DNA溶液的光吸收值約為0.020,故測定未知濃度RNA或DNA溶液在260nm的(de)光(guang)吸(xi)收(shou)值(zhi)即(ji)可(ke)計(ji)算(suan)出(chu)其(qi)中(zhong)核(he)酸(suan)的(de)含(han)量(liang)。此(ci)法(fa)操(cao)作(zuo)簡(jian)便(bian),迅(xun)速(su)。若(ruo)樣(yang)品(pin)內(nei)混(hun)雜(za)有(you)大(da)量(liang)的(de)核(he)苷(gan)酸(suan)或(huo)蛋(dan)白(bai)質(zhi)等(deng)能(neng)吸(xi)收(shou)紫(zi)外(wai)光(guang)的(de)物(wu)質(zhi),則(ze)測(ce)光(guang)誤(wu)差(cha)較(jiao)大(da),故(gu)應(ying)設(she)法(fa)事(shi)先(xian)除(chu)去(qu)。NanoDrop及其它紫外分光光度計均采用紫外吸光度進行檢測,它無法區分出DNA、RNA、降解核酸、遊離核苷酸及其它雜質。盡管紫外吸收定量法是最常用的一種DNA或RNA定量方法,但其讀數並不可靠,不能用於後續建庫的參考。
Qubit
Qubit熒光計是新一代核酸和蛋白定量儀,實驗台上可以對DNA和RNA進行精準定量,它可以采用熒光染料檢測特定目標分子的濃度。它采用的是熒光檢測技術,該技術采用與DNA、RNA或蛋白質結合後才發出熒光的Molecular Probes® ranliao。zhexieyingguangranliaokeyiteyidiyubutongzhongleidehesuanlianxiangjiehe,bingzaitedingbochangguangyuandejifaxia,fachuyingguang。qizhong,jiehelehesuandeyingguangranliao,xiangbinaxieyoulide,xinhaokezengfushushibeizhishubaibei,yincikeyihebeijingqufenkailai。muqian,zuocexudeshiyanshijibenbaQubit當標配儀器了。
雖然以Nanodrop為代表的紫外吸收法在科研領域已經沿用了數十年,但由於原理上的限製,這一類儀器有無法避免的缺陷。
1、紫外吸收法無法區分DNA和RNA
這一點其實在原理上就很好理解了。如下圖所示,具有紫外吸收的結構是核酸的堿基,而DNA和RNA均含有堿基,因此當一份樣品同時含有DNA和RNA的時候,無論你本意是想測哪一個,均會高估其真實濃度。
而Qubit的熒光染料法則避免了這個問題。隻要采用DNA、RNA特異的染料,就能有選擇性地測定樣品中的核酸濃度。下圖是Qubit的官方測試數據。這個實驗是在DNA樣品中混合入不同比例的RNA,並用Qubit法和紫外吸收法分別進行測定。當DNA的樣品足夠純時(DNA:RNA = 10:0),兩種方法測得的數值並沒有顯著區別。但當混入的RNA越來越多,紫外吸收的數值也跟著升高(藍色和綠色柱子),而使用雙鏈DNA染料的Qubit數值則沒有改變(紅色柱子)。使用RNA染料用Qubit進行測定,則會發現,隨著RNA混入的增加,讀數也跟著升高。
目前,雙鏈和單鏈DNA、RNA及蛋白質均有特異的熒光染料。也就是說,無需專門純化樣品,或者在未知汙染程度的情況下,使用Qubit可以方便地得知濃度信息。
2、紫外吸收法的定量限較高
對於任何儀器分析,都具備其檢出限和定量限。Nanodrop標稱的檢出限是2ng/µl(雙鏈DNA),然而定量限則遠高於此。其他的Nanodrop用戶也有類似的體驗,曾經在ResearchGate上看到說,低於50ng/µl的話就容易測不準,變異度會增大。以下同樣是來自Qubit的官方數據。當DNA的濃度低於某個程度時,紫外吸收法的偏差和變異度就突破天際了。
Qubit與紫外吸收法測定低濃度DNA時的偏差及變異度比較
這兩張圖中,紫外吸收法得到的偏差和變異度在我看來已經算小的了,要低於4 ng/µl雙鏈DNA才會出現問題。然而在實際使用中,低於10甚至20 ng/µl時就比較容易出亂子。而PCR產物膠回收等應用,最終的實際濃度往往就落在這個容易測不準的範圍內。
3、紫外吸收法對溶液的pH和鹽濃度敏感
在研究物質吸光度時,我們總要明確地定義緩衝液的離子強度以及pH,這就說明,吸光度本身是受到這兩個因素影響的。
通常而言,偏酸的溶液,容易給出偏低的A260/A280數值。相反,偏堿的溶液則容易高估。相應地,也有報道稱,當用水作為溶劑時,紫外吸收測定的數值變異度增大,而當使用Tris或Tris-EDTA溶液進行測定時,重複性就提高了。這其中的原因,很可能是空氣中溶解入水中的CO2濃度差異造成的。離子強度對於紫外吸收的影響比較複雜,這裏不展開。
相比之下,熒光染料法對樣品的汙染和pH等的容忍度較大。
4、紫外吸收法對降解比較嚴重的核酸無能為力
zheyidian,tongyangyeshiyouziwaixishouyuanlidejuxianxingsuojuedingde。ziwaixishoucedingdeduixiangshijianji,yinciwulunhesuanshiwanzhengchengliande,haishijiangjiechengdangeyoulihegansuan,gaifangfajunwufajiayiqufen。jinguanwomenkeyitongguoA260/A280數值是否過大來估計核酸樣品的降解狀況,但卻無法選擇性地隻測定那些結構完整的核酸的濃度。
而(er)熒(ying)光(guang)染(ran)料(liao)通(tong)常(chang)結(jie)合(he)的(de)是(shi)核(he)酸(suan)的(de)鏈(lian)結(jie)構(gou),並(bing)不(bu)會(hui)與(yu)遊(you)離(li)的(de)單(dan)核(he)苷(gan)酸(suan)相(xiang)互(hu)作(zuo)用(yong)。不(bu)過(guo)話(hua)說(shuo)回(hui)來(lai),對(dui)於(yu)那(na)些(xie)尚(shang)未(wei)降(jiang)解(jie)成(cheng)單(dan)個(ge)核(he)苷(gan)酸(suan)而(er)呈(cheng)短(duan)鏈(lian)狀(zhuang)態(tai)的(de)核(he)酸(suan),熒(ying)光(guang)染(ran)料(liao)法(fa)是(shi)無(wu)法(fa)將(jiang)其(qi)與(yu)完(wan)整(zheng)核(he)酸(suan)區(qu)分(fen)開(kai)來(lai)的(de)。
結語
如果在實驗中獲得的核酸樣品總是很純淨且均一(如原材料是容易對付的培養細胞,還用品質好的試劑盒進行抽提;而非奇奇怪怪的極端樣品,還要是自己配的試劑),同時產量又很高,那紫外吸收法完全可以勝任,外加測定速度秒殺熒光染料法。此外,熒光染料法對溫度比較敏感,比如上一回是在25℃室溫製作並儲存的標準曲線,而這一回要測定樣品時實驗室空調壞掉,一下子有了3℃以上的溫差,那麼標曲就得重新製作。同時,熒光染料要現用現配,樣品至少要染2min,花費的時間比紫外吸收法要長。
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